[0001] 本发明涉及生物发酵技术领域，更具体的说是涉及一种同时生产赤藓糖醇和葡萄糖酸钠的方法。

[0002] 葡萄糖酸钠生产多采用微生物发酵法和酶法，两种方法的原理均为葡萄糖氧化酶(GOD)和过氧化氢酶(CAT)催化葡萄糖和氧气反应生成葡萄糖酸，此过程中伴随着过氧化氢的合成与分解，葡萄糖酸经氢氧化钠中和产生葡萄糖酸钠。其中，酶法生产葡萄糖酸钠较微生物发酵法具有不需要菌种、不受各种辅料浓度影响、节省能源、工艺简化、操作方便、底物浓度高且纯度好、便于提取精制等优点。

[0003] 赤藓糖醇生产方法主要包括直接提取法、化学合成法和微生物发酵法。直接提取法是指从天然来源如水果或蔬菜中提取赤藓糖醇，但由于自然界中赤藓糖醇的含量太低，所以直接提取法很少使用。赤藓糖醇化学合成法所需的高温条件和镍催化剂等导致生产成本高、产品收率效应低、经济效益差，在工业化大规模生产中很难被采纳。在1950年，人们在用酵母发酵黑糖蜜后的残渣中发现了赤藓糖醇的踪迹，这一发现为赤藓糖醇的生产开辟了一条新的途径，即微生物发酵法。目前，微生物发酵法产赤藓糖醇越来越成熟，是进行产业化生产的主要方法。

[0004] 赤藓糖醇和葡萄糖酸钠因生产工艺的不同，需要利用不同的设备进行生产，大大增加了生产成本。

[0005] 因此，提供一种同时生产赤藓糖醇和葡萄糖酸钠的方法是本领域技术人员亟需解决的问题。

[0029] 下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。

[0030] 解脂假丝酵母购买自上海沪峥生物科技有限公司。

[0031] 实施例1

[0032] (1)摇瓶、种子罐、发酵罐培养基配制：按照酵母粉5g/L、蛋白胨10g/L、氯化钠10g/L配制摇瓶培养基，调节pH＝6.5；按照葡萄糖150g/L、酵母粉15g/L、硫酸镁0.5g/L、柠檬酸钠5g/L配制种子罐培养基，调节pH＝4.0；按照葡萄糖300g/L、酵母粉15g/L、硫酸镁0.5g/L、柠檬酸钠5g/L、玉米浆1.0g/L配制发酵罐培养基，调节pH＝4.0；

[0033] (2)赤藓糖醇摇瓶培养：

[0034] 在一级摇瓶中接入1ml OD＝5.0的解脂假丝酵母，于28℃、180rpm条件下培养20h，获得OD＝5.0的一级摇瓶种子；一级摇瓶体积为500ml，装有100ml摇瓶培养基；

[0035] 将一级摇瓶种子全部接种于二级摇瓶中，于28℃、180rpm条件下培养10h，获得OD＝10.0的二级摇瓶种子；二级摇瓶体积为5000ml，装有1500ml摇瓶培养基；

[0036] (3)赤藓糖醇一、二、三级种子罐接种、培养：

[0037] 一级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级摇瓶种子接种于一级种子罐中，接种量为3％，控制培养条件为：温度＝28℃、溶氧DO＝10％，pH自然；培养至种子OD＝10.0时获得一级种子罐种子，转接二级种子罐；

[0038] 二级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将一级种子罐种子接种于二级种子罐中，接种量为5％，控制培养条件为：温度＝28℃、DO＝10％，pH自然；培养至种子OD＝10.0时获得二级种子罐种子，转接三级种子罐；

[0039] 三级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级种子罐种子接种于三级种子罐中，接种量为10％，控制培养条件为：温度＝28℃、DO＝20％，pH自然；培养至种子OD＝15.0时获得三级种子罐种子，转接发酵罐；

[0040] (4)发酵罐接种、发酵：发酵罐按照70％装液量加发酵罐培养基灭菌，降温至30℃时接种三级种子罐种子，接种量为10％，控制发酵条件为：温度＝28℃、DO≥20％，pH不做控制；

[0041] (5)添加双酶生产葡萄糖酸钠：发酵至40h，发酵罐内剩余葡萄糖含量＝180g/L；按照葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶的添加比例为1.5：1.8kg/t葡萄糖向罐内添加葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶；控制反应条件为：温度＝38℃、DO＝50％，pH＝5.0；反应10.5h，罐内葡萄糖≤0.5g/L时停止发酵；葡萄糖氧化酶酶活≥20000u/ml；过氧化氢酶酶活≥600000u/ml；

[0042] (6)陶瓷膜、纳滤膜过滤：将得到的发酵液通过滤芯孔径大小为0.1μm的陶瓷膜除去菌体，通过滤芯孔径大小为200Da的纳滤膜除去寡糖，得到赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液；

[0043] (7)色谱分离、结晶：将得到的赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液按照DS＝45％、温度＝55℃通过色谱设备进行分离，分别得到纯度≥99.5％的赤藓糖醇溶液和葡萄糖酸钠溶液；将分离得到的赤藓糖醇溶液按照DS＝60％、温度＝60℃在煮糖罐中处理3h，得到赤藓糖醇晶体，检测纯度＝99.91％；将分离得到的葡萄糖酸钠溶液按照DS＝60％、温度＝75℃在煮糖罐中处理2.5h，得到葡萄糖酸钠晶体，检测纯度＝99.92％。

[0044] 实施例2

[0045] (1)摇瓶、种子罐、发酵罐培养基配制：按照酵母粉5g/L、蛋白胨10g/L、氯化钠10g/L配制摇瓶培养基，调节pH＝6.75；按照葡萄糖175g/L、酵母粉17.5g/L、硫酸镁0.75g/L、柠檬酸钠7.5g/L配制种子罐培养基，调节pH＝4.25；按照葡萄糖315g/L、酵母粉17.5g/L、硫酸镁0.75g/L、柠檬酸钠7.5g/L、玉米浆1.25g/L配制发酵罐培养基，调节pH＝4.25；

[0046] (2)赤藓糖醇摇瓶培养：

[0047] 在一级摇瓶中接入1ml OD＝7.5的解脂假丝酵母，于29℃、190rpm条件下培养22h，获得OD＝7.5的一级摇瓶种子；一级摇瓶体积为500ml，装有100ml摇瓶培养基；

[0048] 将一级摇瓶种子全部接种于二级摇瓶中，于29℃、190rpm条件下培养12.5h，获得OD＝13的二级摇瓶种子；二级摇瓶体积为5000ml，装有1500ml摇瓶培养基；

[0049] (3)赤藓糖醇一、二、三级种子罐接种、培养：

[0050] 一级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级摇瓶种子接种于一级种子罐中，接种量为3％，控制培养条件为：温度＝29℃、溶氧DO＝15％，pH自然；培养至种子OD＝13时获得一级种子罐种子，转接二级种子罐；

[0051] 二级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将一级种子罐种子接种于二级种子罐中，接种量为5％，控制培养条件为：温度＝29℃、DO＝15％，pH自然；培养至种子OD＝13时获得二级种子罐种子，转接三级种子罐；

[0052] 三级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级种子罐种子接种于三级种子罐中，接种量为10％，控制培养条件为：温度＝29℃、DO＝25％，pH自然；培养至种子OD＝17时获得三级种子罐种子，转接发酵罐；

[0053] (4)发酵罐接种、发酵：发酵罐按照70％装液量加发酵罐培养基灭菌，降温至30℃时接种三级种子罐种子，接种量为10％，控制发酵条件为：温度＝29℃、DO≥20％，pH不做控制；

[0054] (5)添加双酶生产葡萄糖酸钠：发酵至45h，发酵罐内剩余葡萄糖含量＝165g/L；按照葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶的添加比例为1.5：1.8kg/t葡萄糖向罐内添加葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶；控制反应条件为：温度＝39℃、DO＝60％，pH＝5.3；反应10h，罐内葡萄糖≤0.5g/L时停止发酵；葡萄糖氧化酶酶活≥20000u/ml；过氧化氢酶酶活≥600000u/ml；

[0055] (6)陶瓷膜、纳滤膜过滤：将得到的发酵液通过滤芯孔径大小为0.1μm的陶瓷膜除去菌体，通过滤芯孔径大小为230Da的纳滤膜除去寡糖，得到赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液；

[0056] (7)色谱分离、结晶：将得到的赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液按照DS＝50％、温度＝57.5℃通过色谱设备进行分离，分别得到纯度≥99.5％的赤藓糖醇溶液和葡萄糖酸钠溶液；将分离得到的赤藓糖醇溶液按照DS＝62.5％、温度＝62.5℃在煮糖罐中处理2.5h，得到赤藓糖醇晶体，检测纯度＝99.92％；将分离得到的葡萄糖酸钠溶液按照DS＝62.5％、温度＝77.5℃在煮糖罐中处理2.25h，得到葡萄糖酸钠晶体，检测纯度＝99.93％。

[0057] 实施例3

[0058] (1)摇瓶、种子罐、发酵罐培养基配制：按照酵母粉5g/L、蛋白胨10g/L、氯化钠10g/L配制摇瓶培养基，调节pH＝7.0；按照葡萄糖200g/L、酵母粉20g/L、硫酸镁1.0g/L、柠檬酸钠10g/L配制种子罐培养基，调节pH＝4.5；按照葡萄糖330g/L、酵母粉20g/L、硫酸镁1.0g/L、柠檬酸钠10g/L、玉米浆1.5g/L配制发酵罐培养基，调节pH＝4.5；

[0059] (2)赤藓糖醇摇瓶培养：

[0060] 在一级摇瓶中接入1ml OD＝10的解脂假丝酵母，于30℃、200rpm条件下培养24h，获得OD＝10的一级摇瓶种子；一级摇瓶体积为500ml，装有100ml摇瓶培养基；

[0061] 将一级摇瓶种子全部接种于二级摇瓶中，于30℃、200rpm条件下培养15h，获得OD＝15的二级摇瓶种子；二级摇瓶体积为5000ml，装有1500ml摇瓶培养基；

[0062] (3)赤藓糖醇一、二、三级种子罐接种、培养：

[0063] 一级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级摇瓶种子接种于一级种子罐中，接种量为3％，控制培养条件为：温度＝30℃、溶氧DO＝20％，pH自然；培养至种子OD＝15时获得一级种子罐种子，转接二级种子罐；

[0064] 二级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将一级种子罐种子接种于二级种子罐中，接种量为5％，控制培养条件为：温度＝30℃、DO＝20％，pH自然；培养至种子OD＝15时获得二级种子罐种子，转接三级种子罐；

[0065] 三级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级种子罐种子接种于三级种子罐中，接种量为10％，控制培养条件为：温度＝30℃、DO＝30％，pH自然；培养至种子OD＝20时获得三级种子罐种子，转接发酵罐；

[0066] (4)发酵罐接种、发酵：发酵罐按照70％装液量加发酵罐培养基灭菌，降温至30℃时接种三级种子罐种子，接种量为10％，控制发酵条件为：温度＝30℃、DO≥20％，pH不做控制；

[0067] (5)添加双酶生产葡萄糖酸钠：发酵至50h，发酵罐内剩余葡萄糖含量＝150g/L；按照葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶的添加比例为1.5：1.8kg/t葡萄糖向罐内添加葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶；控制反应条件为：温度＝40℃、DO＝70％，pH＝5.5；反应9.5h，罐内葡萄糖≤0.5g/L时停止发酵；葡萄糖氧化酶酶活≥20000u/ml；过氧化氢酶酶活≥600000u/ml；

[0068] (6)陶瓷膜、纳滤膜过滤：将得到的发酵液通过滤芯孔径大小为0.1μm的陶瓷膜除去菌体，通过滤芯孔径大小为250Da的纳滤膜除去寡糖，得到赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液；

[0069] (7)色谱分离、结晶：将得到的赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液按照DS＝55％、温度＝60℃通过色谱设备进行分离，分别得到纯度≥99.5％的赤藓糖醇溶液和葡萄糖酸钠溶液；将分离得到的赤藓糖醇溶液按照DS＝66％、温度＝65℃在煮糖罐中处理2h，得到赤藓糖醇晶体，检测纯度＝99.92％；将分离得到的葡萄糖酸钠溶液按照DS＝65％、温度＝80℃在煮糖罐中处理2h，得到葡萄糖酸钠晶体，检测纯度＝99.93％。

[0070] 对比例1(调整参数)

[0071] (1)摇瓶、种子罐、发酵罐培养基配制：按照酵母粉5g/L、蛋白胨10g/L、氯化钠10g/L配制摇瓶培养基，调节pH＝6.4；按照葡萄糖140g/L、酵母粉14g/L、硫酸镁0.4g/L、柠檬酸钠4g/L配制种子罐培养基，调节pH＝3.9；按照葡萄糖290g/L、酵母粉14g/L、硫酸镁0.4g/L、柠檬酸钠4g/L、玉米浆0.9g/L配制发酵罐培养基，调节pH＝3.9；

[0072] (2)赤藓糖醇摇瓶培养：

[0073] 在一级摇瓶中接入1ml OD＝4.0的解脂假丝酵母，于27℃、170rpm条件下培养19h，获得OD＝3.5的一级摇瓶种子；一级摇瓶体积为500ml，装有100ml摇瓶培养基；

[0074] 将一级摇瓶种子全部接种于二级摇瓶中，于27℃、170rpm条件下培养9h，获得OD＝7.5的二级摇瓶种子；二级摇瓶体积为5000ml，装有1500ml摇瓶培养基；

[0075] (3)赤藓糖醇一、二、三级种子罐接种、培养：

[0076] 一级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级摇瓶种子接种于一级种子罐中，接种量为3％，控制培养条件为：温度＝27℃、溶氧DO＝9％，pH自然；培养至种子OD＝9时获得一级种子罐种子，转接二级种子罐；

[0077] 二级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将一级种子罐种子接种于二级种子罐中，接种量为5％，控制培养条件为：温度＝27℃、DO＝9％，pH自然；培养至种子OD＝9时获得二级种子罐种子，转接三级种子罐；

[0078] 三级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级种子罐种子接种于三级种子罐中，接种量为10％，控制培养条件为：温度＝27℃、DO＝19％，pH自然；培养至种子OD＝14时获得三级种子罐种子，转接发酵罐；

[0079] (4)发酵罐接种、发酵：发酵罐按照70％装液量加发酵罐培养基灭菌，降温至30℃时接种三级种子罐种子，接种量为10％，控制发酵条件为：温度＝27℃、DO≥20％，pH不做控制；

[0080] (5)添加双酶生产葡萄糖酸钠：发酵至40h，发酵罐内剩余葡萄糖含量＝210g/L；按照葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶的添加比例为1.5：1.8kg/t葡萄糖向罐内添加葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶；控制反应条件为：温度＝37℃、DO＝49％，pH＝4.9；反应15h，罐内葡萄糖≤0.5g/L时停止发酵；葡萄糖氧化酶酶活≥20000u/ml；过氧化氢酶酶活≥600000u/ml；

[0081] (6)陶瓷膜、纳滤膜过滤：将得到的发酵液通过滤芯孔径大小为0.1μm的陶瓷膜除去菌体，通过滤芯孔径大小为180Da的纳滤膜除去寡糖，得到赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液；

[0082] (7)色谱分离、结晶：将得到的赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液按照DS＝44％、温度＝54℃通过色谱设备进行分离，分别得到纯度≥99.5％的赤藓糖醇溶液和葡萄糖酸钠溶液；将分离得到的赤藓糖醇溶液按照DS＝59％、温度＝59℃在煮糖罐中处理2.5h，得到赤藓糖醇晶体，检测纯度＝98.82％；将分离得到的葡萄糖酸钠溶液按照DS＝59％、温度＝74℃在煮糖罐中处理2.4h，得到葡萄糖酸钠晶体，检测纯度＝97.62％。

[0083] 对比例2(调整参数)

[0084] (1)摇瓶、种子罐、发酵罐培养基配制：按照酵母粉5g/L、蛋白胨10g/L、氯化钠10g/L配制摇瓶培养基，调节pH＝7.1；按照葡萄糖210g/L、酵母粉21g/L、硫酸镁1.1g/L、柠檬酸钠11g/L配制种子罐培养基，调节pH＝4.6；按照葡萄糖340g/L、酵母粉21g/L、硫酸镁1.1g/L、柠檬酸钠11g/L、玉米浆1.6g/L配制发酵罐培养基，调节pH＝4.6；

[0085] (2)赤藓糖醇摇瓶培养：

[0086] 在一级摇瓶中接入1ml OD＝11的解脂假丝酵母，于31℃、210rpm条件下培养25h，获得OD＝15的一级摇瓶种子；一级摇瓶体积为500ml，装有100ml摇瓶培养基；

[0087] 将一级摇瓶种子全部接种于二级摇瓶中，于31℃、210rpm条件下培养16h，获得OD＝17的二级摇瓶种子；二级摇瓶体积为5000ml，装有1500ml摇瓶培养基；

[0088] (3)赤藓糖醇一、二、三级种子罐接种、培养：

[0089] 一级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级摇瓶种子接种于一级种子罐中，接种量为3％，控制培养条件为：温度＝31℃、溶氧DO＝25％，pH自然；培养至种子OD＝18时获得一级种子罐种子，转接二级种子罐；

[0090] 二级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将一级种子罐种子接种于二级种子罐中，接种量为5％，控制培养条件为：温度＝31℃、DO＝25％，pH自然；培养至种子OD＝17时获得二级种子罐种子，转接三级种子罐；

[0091] 三级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级种子罐种子接种于三级种子罐中，接种量为10％，控制培养条件为：温度＝31℃、DO＝35％，pH自然；培养至种子OD＝25时获得三级种子罐种子，转接发酵罐；

[0092] (4)发酵罐接种、发酵：发酵罐按照70％装液量加发酵罐培养基灭菌，降温至30℃时接种三级种子罐种子，接种量为10％，控制发酵条件为：温度＝31℃、DO≥20％，pH不做控制；

[0093] (5)添加双酶生产葡萄糖酸钠：发酵至55h，发酵罐内剩余葡萄糖含量＝150g/L；按照葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶的添加比例为1.5：1.8kg/t葡萄糖向罐内添加葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶；控制反应条件为：温度＝41℃、DO＝75％，pH＝5.6；反应13h，罐内葡萄糖≤0.5g/L时停止发酵；葡萄糖氧化酶酶活≥20000u/ml；过氧化氢酶酶活≥600000u/ml；

[0094] (6)陶瓷膜、纳滤膜过滤：将得到的发酵液通过滤芯孔径大小为0.1μm的陶瓷膜除去菌体，通过滤芯孔径大小为260Da的纳滤膜除去寡糖，得到赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液；

[0095] (7)色谱分离、结晶：将得到的赤藓糖醇和葡萄糖酸钠澄清溶液按照DS＝56％、温度＝61℃通过色谱设备进行分离，分别得到纯度≥99.5％的赤藓糖醇溶液和葡萄糖酸钠溶液；将分离得到的赤藓糖醇溶液按照DS＝67％、温度＝66℃在煮糖罐中处理2.5h，得到赤藓糖醇晶体，检测纯度＝97.32％；将分离得到的葡萄糖酸钠溶液按照DS＝66％、温度＝81℃在煮糖罐中处理2.5h，得到葡萄糖酸钠晶体，检测纯度＝96.44％。

[0096] 对比例3(只进行赤藓糖醇发酵)

[0097] (1)摇瓶、种子罐、发酵罐培养基配制：按照酵母粉5g/L、蛋白胨10g/L、氯化钠10g/L配制摇瓶培养基，调节pH＝6.75；按照葡萄糖175g/L、酵母粉17.5g/L、硫酸镁0.75g/L、柠檬酸钠7.5g/L配制种子罐培养基，调节pH＝4.25；按照葡萄糖315g/L、酵母粉17.5g/L、硫酸镁0.75g/L、柠檬酸钠7.5g/L、玉米浆1.25g/L配制发酵罐培养基，调节pH＝4.25；

[0098] (2)赤藓糖醇摇瓶培养：

[0099] 在一级摇瓶中接入1ml OD＝7.5的解脂假丝酵母，于29℃、190rpm条件下培养22h，获得OD＝7.5的一级摇瓶种子；一级摇瓶体积为500ml，装有100ml摇瓶培养基；

[0100] 将一级摇瓶种子全部接种于二级摇瓶中，于29℃、190rpm条件下培养12.5h，获得OD＝13的二级摇瓶种子；二级摇瓶体积为5000ml，装有1500ml摇瓶培养基；

[0101] (3)赤藓糖醇一、二、三级种子罐接种、培养：

[0102] 一级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级摇瓶种子接种于一级种子罐中，接种量为3％，控制培养条件为：温度＝29℃、溶氧DO＝15％，pH自然；培养至种子OD＝13时获得一级种子罐种子，转接二级种子罐；

[0103] 二级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将一级种子罐种子接种于二级种子罐中，接种量为5％，控制培养条件为：温度＝29℃、DO＝15％，pH自然；培养至种子OD＝13时获得二级种子罐种子，转接三级种子罐；

[0104] 三级种子罐按照70％装液量加种子罐培养基灭菌，将二级种子罐种子接种于三级种子罐中，接种量为10％，控制培养条件为：温度＝29℃、DO＝25％，pH自然；培养至种子OD＝17时获得三级种子罐种子，转接发酵罐；

[0105] (4)发酵罐接种、发酵：发酵罐按照70％装液量加发酵罐培养基灭菌，降温至30℃时接种三级种子罐种子，接种量为10％，控制发酵条件为：温度＝29℃、DO≥20％，pH不做控制；发酵100h，罐内葡萄糖≤0.5g/L时停止发酵；

[0106] (5)陶瓷膜、纳滤膜过滤：将得到的发酵液通过滤芯孔径大小为0.1μm的陶瓷膜除去菌体，通过滤芯孔径大小为230Da的纳滤膜除去寡糖，得到赤藓糖醇澄清溶液；

[0107] (6)赤藓糖醇结晶：将得到的赤藓糖醇溶液按照DS＝62.5％、温度＝62.5℃在煮糖罐中处理2.5h，得到赤藓糖醇晶体，检测纯度＝99.91％。

[0108] 对比例4(只进行葡萄糖酸钠发酵)

[0109] (1)添加双酶生产葡萄糖酸钠：按70％装液量向发酵罐内加入含量为310g/L的葡萄糖溶液，按照葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶的添加比例为1.5：1.8kg/t葡萄糖向罐内添加葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶；控制反应条件为：温度＝39℃、DO＝60％，pH＝5.3；反应22h，罐内葡萄糖≤0.5g/L时停止发酵；葡萄糖氧化酶酶活≥20000u/ml；过氧化氢酶酶活≥600000u/ml；

[0110] (2)陶瓷膜、纳滤膜过滤：将得到的发酵液通过滤芯孔径大小为0.1μm的陶瓷膜除去杂质，通过滤芯孔径大小为230Da的纳滤膜除去寡糖，得到葡萄糖酸钠澄清溶液；

[0111] (3)葡萄糖酸钠结晶：将得到的葡萄糖酸钠溶液按照DS＝62.5％、温度＝77.5℃在煮糖罐中处理2.25h，得到葡萄糖酸钠晶体，检测纯度＝99.93％。

[0112] 实施例1‑3与对比例1‑4的反应时长、赤藓糖醇和葡萄糖酸钠的纯度对比见表1。

[0113] 表1实施例1‑3与对比例1‑4的反应时长、赤藓糖醇和葡萄糖酸钠的纯度对比[0114]

[0115]

[0116] 由表1可知，本发明一种同时生产赤藓糖醇和葡萄糖酸钠的方法实现了一套设备同时生产赤藓糖醇和葡萄糖酸钠两种产品；与单独生产赤藓糖醇和葡萄糖酸钠相比，将赤藓糖醇发酵时间从100h缩短到40‑50h，将葡萄糖酸钠发酵时间从20h以上缩短到10h左右，提高了生产效率。

[0117] 对所公开的实施例的上述说明，使本领域专业技术人员能够实现或使用本发明。对这些实施例的多种修改对本领域的专业技术人员来说将是显而易见的，本文中所定义的一般原理可以在不脱离本发明的精神或范围的情况下，在其它实施例中实现。因此，本发明将不会被限制于本文所示的这些实施例，而是要符合与本文所公开的原理和新颖特点相一致的最宽的范围。