技术领域
[0001] 本发明涉及生物技术领域中,从人体体液或者细胞的培养液中提取外泌体及外泌体蛋白的方法。
相关背景技术
[0002] 外泌体是哺乳动物细胞通过“内吞-外排”过程分泌到细胞外的一类囊泡状结构,直径约为30-150nm。外泌体不仅存在于细胞培养液中,也存在于血液、尿液、羊水、母乳、精液、唾液、胸腔积液等体液中,其组成包括脂质双分子层以及细胞来源相关的蛋白质、RNA、DNA等物质。几乎所有的细胞都可以产生外泌体,不同细胞来源的外泌体中既包含与细胞形成、结构和物质转运相关的共有成分,也包含与来源细胞的生物功能相关的特异分子。外泌体作为一种细胞间交流、传递大量的生物功能分子的重要方式日益受到重视。研究表明,外泌体在一系列生理和病理过程中起到至关重要的作用。肿瘤相关外泌体能够诱导癌症发生、参与肿瘤靶向转移、改善肿瘤生长的微环境、抑制免疫系统对肿瘤的免疫监督以及介导肿瘤细胞抗药性,对肿瘤外泌体的分析和检测有利于肿瘤的早期诊断、预后分析和疗效评价。
[0003] 目前常用的外泌体提取方法包括超速离心法、密度梯度离心法、聚合物沉淀法、超滤法、体积排阻色谱、免疫亲和法。前四种方法基于外泌体独特的密度、尺寸等物理学参数实现提取,缺乏特异性,不能满足实际样本中肿瘤细胞外泌体特异性提取和分析的要求。尤其人体体液样本中,含有大量的低密度脂蛋白及乳糜微粒等微粒,这些微粒的粒径和密度与外泌体接近,绝大部分方法无法将其与外泌体分离开,从而对外泌体的后续分析造成干扰。
具体实施方式
[0061] 下面结合具体实施方式对本发明进行进一步的详细描述,给出的实施例仅为了阐明本发明,而不是为了限制本发明的范围。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的材料、试剂、仪器等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。以下实施例中的定量试验,均设置三次重复实验,结果取平均值。
[0062] 下述实施例中的DMEM缓冲液为Gibico公司产品,货号31053-028。
[0063] 下述实施例中的PBS为Corning公司产品,货号:21-040-CVR。
[0064] 本发明提供了一种外泌体的提取方法,该方法包括:向含有外泌体的待提取液中加入提取材料提取得到外泌体;提取材料为金属氧化物或修饰有所述金属氧化物的功能材料;金属氧化物能与磷酸根离子发生双配位作用。
[0065] 下面以金属氧化物为TiO2、待提取液为人血清、细胞培养液和尿液为例具体阐述外泌体的提取方法。下述实施例中的离心,如无特殊说明,均在4℃进行。
[0066] 实施例1、外泌体提取
[0067] 一、人血清中外泌体的提取及其蛋白质的LC-MS/MS分析
[0068] 步骤1:血清样本预处理
[0069] 取100μL人血清(经该人知情同意),按体积比1:1向血清中加入DMEM缓冲液稀释,得到血清稀释液;将血清稀释液进行梯度密度离心除去死细胞和/或细胞残渣,离心条件为:300g离心10分钟,2000g离心10分钟,10000g离心30分钟,取上清液,将上清液经0.2μm滤膜过滤后,收集滤液,即为预处理后的血清样本。
[0070] 步骤2:血清样本中外泌体提取
[0071] 称取5mg TiO2,分别用纯水和DMEM缓冲液润洗2次,得到清洗后的TiO2;向清洗后的TiO2中加入步骤1得到的预处理后的血清样本200μL,得到提取混合物;将提取混合物在4℃下震荡(1500rpm)孵育5分钟后,在2000g下离心30秒,使外泌体进入沉淀中,收集沉淀;向沉淀中加入洗涤缓冲液(该缓冲液为PBS)震荡洗涤沉淀(洗涤通过在2000g下离心30秒收集沉淀完成),得到洗涤后的沉淀;向洗涤后的沉淀中加入洗脱液(该洗脱液为10g/100mL的氨水),得到洗脱混合物;将洗脱混合物在2000g下离心30秒,使外泌体进入上清夜中,收集上清液,即得到外泌体提取液;将得到的外泌体提取液在2000g下离心30秒,使外泌体进入沉淀中,收集沉淀,即得到外泌体。
[0072] 提取外泌体蛋白,利用western-blot检测其外泌体标志蛋白TSG101和CD9,结果如图1所示,结果显示,得到的外泌体中含有TSG101和CD9。
[0073] 步骤3:外泌体裂解及其蛋白质的LC-MS/MS分析
[0074] 将步骤2所得含有外泌体的材料(即洗涤后的沉淀)置于冰上,向其中加入18μL4g/100mL的SDS水溶液,然后超声(超声条件在100W下进行)裂解20分钟,得到超声产物;将超声产物在16000g下离心5分钟,收集全部上清液;向上清液中加入82μL 8M尿素水溶液和二硫苏糖醇,得到裂解液,该裂解液中二硫苏糖醇的浓度为20mmol/L;将该裂解液在37℃孵育4小时,得到裂解产物;将裂解产物转移至FASP管中,用8M尿素水溶液洗涤(FASP管是一种按分子量截留的管,洗涤过程都是通过离心完成,离心条件为14000g离心10分钟,离心以后,绝大部分溶液和小分子物质被离心至下层接收管子里,外泌体被截留在上层的FASP管中)2次;然后加入碘乙酰胺(终浓度50mmol/L),室温下避光反应1小时,用50mM碳酸氢铵水溶液洗涤3次,加入1μg胰蛋白酶,37℃酶切12小时,将所得溶液45℃热干,用0.1%(v/v)甲酸水溶液定容,得到外泌体蛋白提取液,将外泌体蛋白提取液上样进行LC-MS/MS分析,上样量为
1μg。
[0075] 采集质谱数据然后使用MAXQUANT搜目标数据库检索。所用目标数据库为RefSeq human database。检索参数设置为胰蛋白酶全酶切,设定2个蛋白酶漏切位点,蛋白质固定修饰选取Carbamidomethyl(C),可变修饰为Oxidation(M)。质谱一级质量误差为15ppm,二级质量误差为0.6Da,假阳性率设为1%。
[0076] 结果显示,利用上述方法得到的血清外泌体蛋白的蛋白鉴定数为384,明显优于超速离心法(利用相同的方法进行蛋白质的鉴定,所得蛋白鉴定数为228)和商品化试剂盒(MinuteTM Hi-Efficiency Exosome Precipitation Reagent,公司:Invent Biotechnologies,Inc,货号:CAT#EI-O27)(利用相同的方法进行蛋白质的鉴定,所得蛋白鉴定数为252)(图2)提取同一血清样本的蛋白鉴定数。Gene Ontology分析本发明提取的外泌体蛋白质的细胞成分,结果表明该方法所得蛋白质与外泌体功能更密切(图3)。表明,利用本发明的方法提取外泌体具有更好的提取效果。
[0077] 其中,利用超速离心法提取血清外泌体的步骤如下:取200微升血清,等体积加入PBS稀释后,4℃下2000g离心30分钟,取上清再用12000g离心45分钟,将上清用0.2μm滤膜过滤后,110000g离心70分钟,弃上清,底层沉淀部分用PBS清洗后,再经110000g离心70分钟,弃上清,沉淀部分即超速离心法所得血清外泌体。
[0078] 2、细胞培养液中外泌体提取
[0079] 2.1超速离心法提取外泌体
[0080] 用无外泌体的胎牛血清配置的培养液培养HeLa细胞24-48小时后,收集培养液;将培养液在4℃下,先经300g离心10分钟去除其中的细胞,再经2000g离心10分钟去除其中的死细胞,再经10000g离心30分钟,去除其中的细胞器等,收集上清液,将上清液110000g离心70分钟,沉淀中含有外泌体,将沉淀用PBS清洗后,再经110000g离心70分钟,收集沉淀,将沉淀部分再用PBS清洗后,再经110000g离心70分钟,收集沉淀即得到细胞培养液中的外泌体。
[0081] 2.2标准外泌体评价金属氧化物富集效果
[0082] 将步骤2.1所得外泌体分成数份作为标准外泌体,每份包含2μg蛋白含量对应的外泌体。取2mg TiO2,重悬于100μL DMEM缓冲液中,然后向其中加入1份标准外泌体,在4℃下,1500rpm震荡孵育5分钟,然后将孵育后所得悬浊液2000g离心30秒,沉淀部分用PBS清洗3次,每次洗完2000g离心30秒分离,最后收集沉淀部分,即富集有外泌体的TiO2。
[0083] 通过扫描电镜和透射电镜对富集有外泌体的TiO2进行表征,结果如图4所示,其中,a为未富集有外泌体的TiO2的扫描电镜表征图,b为富集有外泌体的TiO2的扫描电镜表征图,c和d为富集有外泌体的TiO2的透射电镜表征图,d为c的部分放大图。结果显示,TiO2可以成功富集到外泌体。
[0084] 2.3可逆洗脱实验(材料可重复利用)
[0085] 将步骤2.2所得富集有外泌体的TiO2用100μL 10g/100mL的氨水清洗,2000g离心30秒后,收集上清液至于FASP管中,用100μL PBS清洗2次后,分别对清洗后的材料及洗脱的上清液进行表征,结果如图5所示,其中a为氨水洗涤以后的TiO2材料的扫描电镜表征图,b为洗脱的上清液透射电镜表征图。表明,富集有外泌体的TiO2上的外泌体可被洗脱,得到的TiO2可重复利用。
[0086] 2.3利用金属氧化物直接提取细胞培养液中的外泌体
[0087] 将5mg TiO2加入至10mL步骤2.1得到的培养液中,用摇头机摇晃孵育30分钟后,2000g离心30秒,将沉淀用PBS清洗2次后,通过扫描电镜对其进行表征,结果如图6所示。结果显示,金属氧化物可以富集细胞培养液中的外泌体。
[0088] 3、尿液中外泌体提取
[0089] 收集晨尿20mL,依次经2000g离心10分钟,10000g离心30分钟后,将上清用0.2μm滤膜过滤后,加入5mg TiO2材料,用摇头机摇晃孵育30分钟后,2000g离心30秒,将沉淀用PBS清洗2次后,通过扫描电镜对其进行表征,结果如图7所示。结果显示,金属氧化物可以富集尿液中的外泌体。